ВУЗ:
Составители:
Рубрика:
19 20
2.1.Стерилизация.
Изолированные от растения фрагменты (экспланты), которые
помещают на питательную среду, легко поражаются микроорга-
низмами. Поэтому надо стерилизовать как эксплант, так и пита-
тельную среду. Все манипуляции с изолированными тканями (вве-
дение в культуру, пересадка на свежую питательную среду) прово-
дят в асептическом помещении (ламинар-боксе) стерильными ин-
струментами. Стерильность надо соблюдать и во время культиви-
рования изолированных тканей.
Чистую посуду, предварительно завернутую в бумагу или в
фольгу, инструменты, бумагу, вату стерилизуют сухим жаром в
сушильном шкафу при температуре 160
о
С в течение 1,5 – 2 ч. Пи-
тательные среды стерилизуют в автоклаве при температуре 120
о
С
и давлении 0.75 – 1 атм в течение 20 мин. Если в состав питатель-
ных сред входят вещества, разрушающиеся при автоклавировании,
их следует стерилизовать путем фильтрации через бактериальный
фильтр. Затем стерильные профильтрованные компоненты добав-
ляют в проавтоклавированную среду, охлажденную до температу-
ры 40
о
С.
Растительные ткани сами по себе могут служить серьезным
источником заражения, так как на их поверхности всегда находит-
ся эпифитная микрофлора. Поэтому необходима поверхностная
стерилизация, которую проводят следующим образом. Предвари-
тельно часть растения, из которой будет извлечен эксплант, про-
мывают водой с мылом и споласкивают чистой водой. Затем рас-
тительный материал стерилизуют в растворах дезинфицирующих
веществ. Некоторые из этих веществ, а также время стерилизации
представлены в табл. 1.
Таблица 1
Стерилизация исходного растительного материала
(по Р.Г.Бутенко, 1999)
Время стерилизации, мин
Объект
диацид сулема 0,1%
перекись водорода
10-12%
1 2 3 4
Семена сухие 15-20 10-15 12-15
Семена набухшие 6-10 6-8 6-8
Ткани стебля 20-40 20-25 -
листья 1-3 0,5-3 3-5
апексы 1-10 0,5-7 2-7
После выдерживания эксплантов в дезинфицирующем рас-
творе несколько раз промывают в дистиллированной воде и скаль-
пелем удаляют наружные слои клеток на срезах эксплантов, так
как он может быть поврежден при стерилизации.
Микроорганизмы могут находиться и внутри растительной
ткани. Наиболее часто внутреннее инфицирование встречается у
тропических и субтропических растений. Поэтому кроме поверх-
ностной стерилизации иногда приходится применять антибиотики,
которые и убивают микробы внутри ткани. Следует, однако, заме-
тить, что подобная обработка не всегда приводит к стерилизации
внутренних тканей, так как трудно выбрать направленно дейст-
вующий антибиотик.
2.2.Питательные среды.
Изолированные клетки и ткани культивируют на многоком-
понентных питательных средах. Они могут существенно разли-
чаться по своему составу, однако, в состав всех сред обязательно
входят необходимые растениям макро- и микроэлементы, углево-
ды, витамины. Фитогормоны и их синтетические аналоги. Углево-
ды (обычно это сахароза или глюкоза) входят в состав любой пита-
тельной смеси в концентрации 2-3%. Они необходимы в качестве
питательного компонента, так как большинство каллусных тканей
лишено хлорофилла и не способны к автотрофному питанию. По-
этому их выращивают в условиях рассеянного освещения или в
темноте.
Высокое содержание нитратов, ионов аммония, калия, фос-
фата способствует быстрому росту клеток. Истощение среды зна-
чительно снижает рост и процессы вторичного метаболизма. Од-
1 2 3 4
Семена сухие 15-20 10-15 12-15
2.1.Стерилизация.
Семена набухшие 6-10 6-8 6-8
Изолированные от растения фрагменты (экспланты), которые Ткани стебля 20-40 20-25 -
помещают на питательную среду, легко поражаются микроорга- листья 1-3 0,5-3 3-5
низмами. Поэтому надо стерилизовать как эксплант, так и пита- апексы 1-10 0,5-7 2-7
тельную среду. Все манипуляции с изолированными тканями (вве-
дение в культуру, пересадка на свежую питательную среду) прово- После выдерживания эксплантов в дезинфицирующем рас-
дят в асептическом помещении (ламинар-боксе) стерильными ин- творе несколько раз промывают в дистиллированной воде и скаль-
струментами. Стерильность надо соблюдать и во время культиви- пелем удаляют наружные слои клеток на срезах эксплантов, так
рования изолированных тканей. как он может быть поврежден при стерилизации.
Чистую посуду, предварительно завернутую в бумагу или в Микроорганизмы могут находиться и внутри растительной
фольгу, инструменты, бумагу, вату стерилизуют сухим жаром в ткани. Наиболее часто внутреннее инфицирование встречается у
сушильном шкафу при температуре 160оС в течение 1,5 – 2 ч. Пи- тропических и субтропических растений. Поэтому кроме поверх-
тательные среды стерилизуют в автоклаве при температуре 120оС ностной стерилизации иногда приходится применять антибиотики,
и давлении 0.75 – 1 атм в течение 20 мин. Если в состав питатель- которые и убивают микробы внутри ткани. Следует, однако, заме-
ных сред входят вещества, разрушающиеся при автоклавировании, тить, что подобная обработка не всегда приводит к стерилизации
их следует стерилизовать путем фильтрации через бактериальный внутренних тканей, так как трудно выбрать направленно дейст-
фильтр. Затем стерильные профильтрованные компоненты добав- вующий антибиотик.
ляют в проавтоклавированную среду, охлажденную до температу-
ры 40оС. 2.2.Питательные среды.
Растительные ткани сами по себе могут служить серьезным Изолированные клетки и ткани культивируют на многоком-
источником заражения, так как на их поверхности всегда находит- понентных питательных средах. Они могут существенно разли-
ся эпифитная микрофлора. Поэтому необходима поверхностная чаться по своему составу, однако, в состав всех сред обязательно
стерилизация, которую проводят следующим образом. Предвари- входят необходимые растениям макро- и микроэлементы, углево-
тельно часть растения, из которой будет извлечен эксплант, про- ды, витамины. Фитогормоны и их синтетические аналоги. Углево-
мывают водой с мылом и споласкивают чистой водой. Затем рас- ды (обычно это сахароза или глюкоза) входят в состав любой пита-
тительный материал стерилизуют в растворах дезинфицирующих тельной смеси в концентрации 2-3%. Они необходимы в качестве
веществ. Некоторые из этих веществ, а также время стерилизации питательного компонента, так как большинство каллусных тканей
представлены в табл. 1. лишено хлорофилла и не способны к автотрофному питанию. По-
Таблица 1 этому их выращивают в условиях рассеянного освещения или в
Стерилизация исходного растительного материала темноте.
(по Р.Г.Бутенко, 1999)
Высокое содержание нитратов, ионов аммония, калия, фос-
Время стерилизации, мин
Объект перекись водорода фата способствует быстрому росту клеток. Истощение среды зна-
диацид сулема 0,1% чительно снижает рост и процессы вторичного метаболизма. Од-
10-12%
19 20
Страницы
- « первая
- ‹ предыдущая
- …
- 7
- 8
- 9
- 10
- 11
- …
- следующая ›
- последняя »
