ВУЗ:
Составители:
Рубрика:
33
проводят учет результатов и при наличии зон задерж-
ки роста тест-культуры измеряют их диаметр, включая
диаметр диска.
В одну чашку одновременно можно помещать 4—5
дисков с испытуемыми экстрактами культур, а для контро-
ля в центр чашки кладут диск, смоченный используемым
растворителем.
II вариант. Определение токсичности грибов с помо-
щью агаровых блоков используют для установления ток-
сичности колоний грибов, выросших в первичных посевах
кормов.
Агаровые блоки готовят с помощью трубчатого свер-
ла из газона 5-дневных колоний грибов в чашках Петри.
Блоки накладывают мицелием на высохшую поверхность
питательной среды с тест-культурой (см. п. 3.) и дальше
поступают, как и с дисками (см. I вариант).
Для стимуляции токсинообразования грибов рода
Fusarium чашки с выросшими культурами перед исследо-
ванием помещают на 2 дня в холодильник при 4—6°С. В
дальнейшем с ними поступают, как указано выше.
Оценка токсичности. Оценку токсичности грибов
проводят на основании величины зон подавления роста
тест-организма, вокруг дисков или блоков:
Степень токсичности Диаметр зон подавления роста
тест-культуры, мм
Токсичные 16 мм и более
Слаботоксичные 9—15 мм
Нетоксичные отсутствие зоны задержки
Обнаружение токсинообразующих грибов позволяет
установить причину токсичности корма и решить вопрос
об его использовании и обезвреживании в соответствии с
санитарно-микологической оценкой и улучшением качест-
ва кормов.
34
Лабораторная работа № 4
Определение токсичности почвы
Почва является не только аккумулятором полезных,
но токсичных элементов, которые подавляют процессы са-
моочищение почвы (биологические, физико-химические и
др.), а также потенциально могут влиять на различные зве-
нья трофической цепи.
Цель работы: Исследование почвы на токсичность
микробиологическим методом.
Реактивы, посуда, приборы: культуры микроорга-
низмов (E.Coli, Bas. Subtillis, дрожжи, грамположительные
бактерии). Среды МПА, Эшби. Чашки Петри, шпатели,
целлофан, пробирки, пипетки на 1 и 10 мл, микропипет-
ки на 0,1 мл, трубчатое сверло 8 мм, термостат, холо-
дильник, диски из фильтровальной бумаги 8 мм.
Подбор тест-культур и выбор и приготовление пита-
тельных сред студенты самостоятельно выполняют к на-
чалу лабораторного занятия.
Ход работы. Свежеприготовленную агаровую среду
разливают в стерильные чашки Петри и после застывания
среды покрывают стерильными пленками целлофана, ко-
торые тщательно расправляют на поверхности агара ме-
таллическим шпателем. Целлофан предварительно выре-
зают кружками с диметром, равным диаметру чашки Пет-
ри, смачивают водой и в таком состоянии стерилизуют в
автоклаве. На поверхность целлофана в центр чашки Петри
с агаром накладывают комочек испытуемой почвы диамет-
ром 3 см, также увлажненной водой. Можно расположить
не один, а 4 комочка на равном расстоянии друг от друга,
тогда диаметр будет несколько меньше, около 1 см. После
наложения комочков почвы на целлофан чашки выдержи-
вают в термостате в течение суток. Через сутки целлофан с
проводят учет результатов и при наличии зон задерж- ки роста тест-культуры измеряют их диаметр, включая Лабораторная работа № 4 диаметр диска. Определение токсичности почвы В одну чашку одновременно можно помещать 4—5 дисков с испытуемыми экстрактами культур, а для контро- Почва является не только аккумулятором полезных, ля в центр чашки кладут диск, смоченный используемым но токсичных элементов, которые подавляют процессы са- растворителем. моочищение почвы (биологические, физико-химические и II вариант. Определение токсичности грибов с помо- др.), а также потенциально могут влиять на различные зве- щью агаровых блоков используют для установления ток- нья трофической цепи. сичности колоний грибов, выросших в первичных посевах Цель работы: Исследование почвы на токсичность кормов. микробиологическим методом. Агаровые блоки готовят с помощью трубчатого свер- Реактивы, посуда, приборы: культуры микроорга- ла из газона 5-дневных колоний грибов в чашках Петри. низмов (E.Coli, Bas. Subtillis, дрожжи, грамположительные Блоки накладывают мицелием на высохшую поверхность бактерии). Среды МПА, Эшби. Чашки Петри, шпатели, питательной среды с тест-культурой (см. п. 3.) и дальше целлофан, пробирки, пипетки на 1 и 10 мл, микропипет- поступают, как и с дисками (см. I вариант). ки на 0,1 мл, трубчатое сверло 8 мм, термостат, холо- Для стимуляции токсинообразования грибов рода дильник, диски из фильтровальной бумаги 8 мм. Fusarium чашки с выросшими культурами перед исследо- Подбор тест-культур и выбор и приготовление пита- ванием помещают на 2 дня в холодильник при 4—6°С. В тельных сред студенты самостоятельно выполняют к на- дальнейшем с ними поступают, как указано выше. чалу лабораторного занятия. Оценка токсичности. Оценку токсичности грибов Ход работы. Свежеприготовленную агаровую среду проводят на основании величины зон подавления роста разливают в стерильные чашки Петри и после застывания тест-организма, вокруг дисков или блоков: среды покрывают стерильными пленками целлофана, ко- торые тщательно расправляют на поверхности агара ме- Степень токсичности Диаметр зон подавления роста таллическим шпателем. Целлофан предварительно выре- тест-культуры, мм зают кружками с диметром, равным диаметру чашки Пет- Токсичные 16 мм и более ри, смачивают водой и в таком состоянии стерилизуют в Слаботоксичные 9—15 мм автоклаве. На поверхность целлофана в центр чашки Петри Нетоксичные отсутствие зоны задержки с агаром накладывают комочек испытуемой почвы диамет- ром 3 см, также увлажненной водой. Можно расположить Обнаружение токсинообразующих грибов позволяет не один, а 4 комочка на равном расстоянии друг от друга, установить причину токсичности корма и решить вопрос тогда диаметр будет несколько меньше, около 1 см. После об его использовании и обезвреживании в соответствии с наложения комочков почвы на целлофан чашки выдержи- санитарно-микологической оценкой и улучшением качест- вают в термостате в течение суток. Через сутки целлофан с ва кормов. 33 34
Страницы
- « первая
- ‹ предыдущая
- …
- 15
- 16
- 17
- 18
- 19
- …
- следующая ›
- последняя »