ВУЗ:
Составители:
Рубрика:
стороны. Таким образом, увеличивается интенсивность
свечения.
3. Применение 2-х зондов с резонансным переносом энергии
(LightCycler assay).
Данный способ детекции накопления продуктов
амплификации отличается повышенной специфичностью, так
как увеличение флуоресценции происходит при
комплементарном связывании с ампликонами сразу 2-х ДНК
зондов. Принцип метода заключается в переносе энергии от
одного флуорофора, находящегося на 3` конце первого зонда,
ко второму флуорофору, находящемуся на 5` конце второго
зонда, причем расстояние между флуорофорами составляет 1-
3 нуклеотида. При одновременном связывании обоих зондов с
ДНК матрицей испускаемое первым флуорофором излучение
передается на второй флуорофор, а его излучение
детектируется прибором. Таким образом, возрастает
специфичность анализа.
4. Использование интеркалирующих агентов.
Этот способ детекции основан на том факте, что
флуоресценция бромистого этидия и SYBR Green I
значительно возрастает при их внедрении в двухцепочечные
молекулы ДНК. Таким образом, можно наблюдать за
накоплением продуктов амплификации. Очень важно
отметить то, что увеличение флуоресценции может быть
связано как с накоплением специфического продукта, так и
неспецифического (праймеры-димеры, шмер). Для получения
корректных результатов необходимо дополнительное
изучение полученных ампликонов с помощью построения так
называемых "кривых плавления" (melting curves).
5.4. Метод ПЦР/ЛОЗ
Для обнаружения однонуклеотидных замен применяют
подходы, объединяющие ПЦР и метод, основанный на
дотировании олигонуклеотидных зондов (ЛОЗ) - ПЦР/ЛОЗ.
Предположим, что в определенном сайте нормального
гена (скажем, в 106-м положении) находится пара А-Т, а в том
же сайте мутантного гена — G-C. Зная нуклеотидные
последовательности, фланкирующие 106-й нуклеотид, можно
синтезировать два коротких (20-нуклеотидных) фрагмента,
прилегающих к данному сайту и комплементарных
противоположным цепям.
Основная особенность этой пары олигонуклеотидов
состоит в том, что 3'-концевой нуклеотид одного из них (зонд
X) комплементарен основанию, находящемуся в 106-м по-
ложении нормальной последовательности, а 5'-концевой
нуклеотид второго (зонд Y) комплементарен нуклеотиду,
примыкающему к 106-му нуклеотиду. При отжиге этих
зондов с содержащей нормальную последовательность
ДНК-мищенью (амплифицированной методом ПЦР)
происходит их полная гибридизация, и при добавлении в
реакционную смесь ДНК-лигазы зонды X и Y ковалентно
сшиваются. Если же эти зонды отжигаются с мутантной ДНК,
в которой произошла замена 106-го нуклеотида то
некомплементарный ему 3'-концевой нуклеотид зонда X не
может образовать с ним пару. И хотя зонд Y по-прежнему
гибридизуется полностью, ДНК-лигаза не может сшить зонды
X и Y.
Можно синтезировать и другие олигонуклеотидные
зонды, полностью соответствующие последовательности с
мутантным 106-м нуклеотидом. При таком наборе
зондов лигирование будет происходить в случае их
отжига с мутантной ДНК-мишенью и не будет в случае
отжига с нормальной мишенью.
стороны. Таким образом, увеличивается интенсивность 5.4. Метод ПЦР/ЛОЗ свечения. Для обнаружения однонуклеотидных замен применяют 3. Применение 2-х зондов с резонансным переносом энергии подходы, объединяющие ПЦР и метод, основанный на (LightCycler assay). дотировании олигонуклеотидных зондов (ЛОЗ) - ПЦР/ЛОЗ. Предположим, что в определенном сайте нормального Данный способ детекции накопления продуктов гена (скажем, в 106-м положении) находится пара А-Т, а в том амплификации отличается повышенной специфичностью, так же сайте мутантного гена — G-C. Зная нуклеотидные как увеличение флуоресценции происходит при последовательности, фланкирующие 106-й нуклеотид, можно комплементарном связывании с ампликонами сразу 2-х ДНК синтезировать два коротких (20-нуклеотидных) фрагмента, зондов. Принцип метода заключается в переносе энергии от прилегающих к данному сайту и комплементарных одного флуорофора, находящегося на 3` конце первого зонда, противоположным цепям. ко второму флуорофору, находящемуся на 5` конце второго Основная особенность этой пары олигонуклеотидов зонда, причем расстояние между флуорофорами составляет 1- состоит в том, что 3'-концевой нуклеотид одного из них (зонд 3 нуклеотида. При одновременном связывании обоих зондов с X) комплементарен основанию, находящемуся в 106-м по- ДНК матрицей испускаемое первым флуорофором излучение ложении нормальной последовательности, а 5'-концевой передается на второй флуорофор, а его излучение нуклеотид второго (зонд Y) комплементарен нуклеотиду, детектируется прибором. Таким образом, возрастает примыкающему к 106-му нуклеотиду. При отжиге этих специфичность анализа. зондов с содержащей нормальную последовательность ДНК-мищенью (амплифицированной методом ПЦР) 4. Использование интеркалирующих агентов. происходит их полная гибридизация, и при добавлении в реакционную смесь ДНК-лигазы зонды X и Y ковалентно Этот способ детекции основан на том факте, что сшиваются. Если же эти зонды отжигаются с мутантной ДНК, флуоресценция бромистого этидия и SYBR Green I в которой произошла замена 106-го нуклеотида то значительно возрастает при их внедрении в двухцепочечные некомплементарный ему 3'-концевой нуклеотид зонда X не молекулы ДНК. Таким образом, можно наблюдать за может образовать с ним пару. И хотя зонд Y по-прежнему накоплением продуктов амплификации. Очень важно гибридизуется полностью, ДНК-лигаза не может сшить зонды отметить то, что увеличение флуоресценции может быть X и Y. связано как с накоплением специфического продукта, так и Можно синтезировать и другие олигонуклеотидные неспецифического (праймеры-димеры, шмер). Для получения зонды, полностью соответствующие последовательности с корректных результатов необходимо дополнительное мутантным 106-м нуклеотидом. При таком наборе изучение полученных ампликонов с помощью построения так зондов лигирование будет происходить в случае их называемых "кривых плавления" (melting curves). отжига с мутантной ДНК-мишенью и не будет в случае отжига с нормальной мишенью.
Страницы
- « первая
- ‹ предыдущая
- …
- 29
- 30
- 31
- 32
- 33
- …
- следующая ›
- последняя »