Торф: химический анализ и основы комплексной переработки. Сергеева М.А - 75 стр.

UptoLike

Рубрика: 

75
ние хлорофилла для окраски мыла, масел, жиров, кремов, алкогольных и безалкогольных напитков,
косметики, одеколона, духов, в качестве дезодоранта и в других целях.
Каротиноиды (от лат. carota – морковь и греч. eidos – вид) – природные органические пигмен-
ты, которые получаются в процессе фотосинтеза в бактериях, грибах, водорослях и высших растени-
ях. Они имеют преимущественно желтый, оранжевый или красный цвет.
Одна из важнейших функций каротиноидов – А-провитаминная активность. Витамин А неза-
меним в процессах, связанных со зрением, ростом, репродукцией, защитой от различных бактери-
альных и грибковых заболеваний, с нормальным функционированием кожи и слизистых. В организ-
ме он может быть получен только путем преобразования каротиноидов.
Группа этих веществ имеет также серьезное влияние и на эндокринную систему человека, уча-
ствуя в регуляции полового развития и созревания, оплодотворения, прохождения репродуктивных
процессов.
Как отмечают ученые, каротиноиды могут косвенно поддерживать водный баланс организма,
способствуют работе обонятельных рецепторов и хеморецепторов. А также важны в кислородных
клетках и тканях человека, потому что используются как запас кислорода в нейрональной дыхатель-
ной цепочке.
Каротиноиды имеют важное значение для формирования костей и зубов.
Природные источники каротиноидов многообразны: травы и зеленые листья, пыльца цветко-
вых растений, лепестки цветов, водоросли, корни, зерна и плоды растений. В широтах с тропиче-
ским климатом источником каротиноидов являются красное пальмовое масло и клубни батата,
ими богаты плоды цитрусовых, абрикосы, хурма. В средних широтах эти вещества есть в плодах
моркови, тыквы, томатов, сладкого перца, облепихи, шиповника, рябины.
Цель работы: определить содержание
хлорофилла a, в, суммы каротиноидов в плодах и ли-
стьях растений.
Оборудование и реактивы:
1. Весы лабораторные с погрешностью взвешивания не более 0,01 г, центрифуга, обеспечиваю-
щая 8 тыс. оборотов, спектрофотометр.
2. Растительный материал (морковь, томаты, облепиха, листья растений).
3. Фарфоровая ступка, пестик, мерные пробирки, мерные цилиндры на 10 мл, ножницы.
4. Ацетон, Na
2
SO
4
.
Ход работы:
Среднюю пробу растительного материала массой 100 мг растирают в холодной ступке в 8 мл
100 %-ного ацетона. Обычно пробу растирают в меньшем количестве ацетона, а остатком обмывают
стенки ступки, по которой пигменты поднимаются при испарении растворителя, чтобы исключить
возможные потери пигментов во время их извлечения. Полученный раствор сливают в центрифуж-
ный стаканчик, добавляют Na
2
SO
4
на кончике ножа и центрифугируют 5 мин при оборотах 8 тыс/мин.
Супернатант сливают в мерный цилиндр или мерную пробирку и доводят ацетоном до объема 8 мл.
Из полученного раствора в пробирку отбирают 1 мл, добавляют к нему 2 мл ацетона и проводят из-
мерения на спектрофотометре: хлорофилл а – при длине волны 662 нм, хлорофилл в644 нм, каро-
тиноиды – 440,5 нм. Можно определить сумму хлорофилла а и в при длине волны 652 нм.
Извлечение пигментов следует проводить в затемненном помещении, по возможности на хо-
лоду (посуда – фарфоровая ступка, пестик – предварительно остужается в морозильной камере)
и завершать определение за 10–20 мин.
Содержание хлорофилла а
а
) в мкг/г растительного материала определяют по формуле:
(46)
Содержание хлорофилла в
в
) в мкг/г растительного материала определяют по формуле:
(47)
Содержание каротиноидов (С
каротиноиды
) в мкг/г растительного материала определяют по формуле:
(48)