ВУЗ:
Составители:
Рубрика:
65
минимальном количестве воды вносят хорошо растертую взвесь
простерилизованного в течение 1 ч при 121° 0,5 г мела и равномерно
распределяют по поверхности пластинки. Чашки подсушивают примерно 1 ч
при 35°. Поверхность пластинки должна иметь вид белой эмали.
На поверхность гелевой пластинки помещают при помощи трафарета
комочки почвы (50—100 шт.). Для этого почву увлажняют, равномерно
растирают и наносят комочки на пластинку иглой или петлей. О развитии
нитрифицирующих бактерий судят по зонам растворения мела вокруг
комочков и появлению нитритов и нитратов около них.
Жидкую среду Виноградского, состоящую из двух выше перечисленных
растворов, можно инокулировать комочками почвы После инкубирования
опытных колб при 28
0
в течение 7-10 дней в культуральной жидкости
определяют нитраты качественной реакцией с дифениламином в
концентрированной Н
2
SO
4
(синее окрашивание)
Количественный учет аммонифицирующих и нитрифицирующих
бактерий в почве проводят обычно с помощью метода предельных разведений.
Почвенную суспензию для посева готовят точно так же, как и при
использовании чашечного метода. Посев производят в пробирки, содержащие
определенное количество жидкой питательной среды. Для определения
аммонификаторов посев 'обычно делают из 10-кратных разведении (до 8 и
более). Для определения нитрификаторов ограничиваются двумя первыми
разведениями. Из каждого разведения почвенной суспензии засевают от двух
до пяти параллельных пробирок с соответствующей питательной средой.
Пипетки во время постановки подобных опытов следует оберегать от
заражения микроорганизмами из воздуха. Для каждого разведения
рекомендуется брать новую стерильную пипетку. Расчет количества
микроорганизмов проводят с помощью таблиц Мак-Креди.
Для обнаружения денитрифицирующих организмов в почве используют
метод накопительной культуры. Опыт проводят на среде Гильтая. Готовят два
раствора: 1) КNО
з
- 2,0 г, аспарагин - 1,0 г, дистиллированная вода - 250 мл; 2)
минимальном количестве воды вносят хорошо растертую взвесь простерилизованного в течение 1 ч при 121° 0,5 г мела и равномерно распределяют по поверхности пластинки. Чашки подсушивают примерно 1 ч при 35°. Поверхность пластинки должна иметь вид белой эмали. На поверхность гелевой пластинки помещают при помощи трафарета комочки почвы (50—100 шт.). Для этого почву увлажняют, равномерно растирают и наносят комочки на пластинку иглой или петлей. О развитии нитрифицирующих бактерий судят по зонам растворения мела вокруг комочков и появлению нитритов и нитратов около них. Жидкую среду Виноградского, состоящую из двух выше перечисленных растворов, можно инокулировать комочками почвы После инкубирования опытных колб при 280 в течение 7-10 дней в культуральной жидкости определяют нитраты качественной реакцией с дифениламином в концентрированной Н2SO4 (синее окрашивание) Количественный учет аммонифицирующих и нитрифицирующих бактерий в почве проводят обычно с помощью метода предельных разведений. Почвенную суспензию для посева готовят точно так же, как и при использовании чашечного метода. Посев производят в пробирки, содержащие определенное количество жидкой питательной среды. Для определения аммонификаторов посев 'обычно делают из 10-кратных разведении (до 8 и более). Для определения нитрификаторов ограничиваются двумя первыми разведениями. Из каждого разведения почвенной суспензии засевают от двух до пяти параллельных пробирок с соответствующей питательной средой. Пипетки во время постановки подобных опытов следует оберегать от заражения микроорганизмами из воздуха. Для каждого разведения рекомендуется брать новую стерильную пипетку. Расчет количества микроорганизмов проводят с помощью таблиц Мак-Креди. Для обнаружения денитрифицирующих организмов в почве используют метод накопительной культуры. Опыт проводят на среде Гильтая. Готовят два раствора: 1) КNОз - 2,0 г, аспарагин - 1,0 г, дистиллированная вода - 250 мл; 2) 65
Страницы
- « первая
- ‹ предыдущая
- …
- 64
- 65
- 66
- 67
- 68
- …
- следующая ›
- последняя »