ВУЗ:
Составители:
Рубрика:
Лабораторная работа 1
Методы исследования. Устройство микроскопа и основные пра-
вила работы с ним
Материал:
микроскопы, постоянные гистологические препараты, пред-
метные и покровные стекла, луковица лука, раствор йода, стеклянные
палочки, препаровальные иглы, бритвы, вода водопроводная, пипетки,
фильтровальная бумага.
Общие сведения
Микроскопические методы. Биологические объекты мож-
но исследовать как живыми, так и фиксированными. Из иссле-
дуемого материала можно приготовить постоянные и временные
препараты. Методика приготовления постоянных препаратов до-
вольно сложна, требует длительного времени и состоит из не-
скольких этапов.
1. Фиксация – это сохранение материала в состоянии,
близком к естественному. Для этого необходимо быстро умерт-
вить ткани. Это лучше достигается при работе с небольшими ку-
сочками живого материала. Используемое для этого вещество на-
зывается фиксатором. Быстрой фиксацией обеспечивается сохра-
нение изначальной структуры объекта, причем ткани подверга-
ются уплотнению, что позволяет готовить из них тонкие срезы.
Фиксацию осуществляют путем погружения материала в
96°-ный этиловый спирт или 4%-ный раствор формалина.
2. Обезвоживание проводится при подготовке материала
к заливке и заключению его в соответствующую среду, которая
не смешивается с водой. Воду необходимо удалить и с целью луч-
шей сохранности препаратов. Для сохранения микроструктуры
материала обезвоживание необходимо проводить не сразу. Это
достигается постепенным увеличением концентрации этилового
спирта (от 50 - до 96°- ного) и заканчивается процесс обезвожи-
вания абсолютным (100°- ным) спиртом.
3. Просветление. Некоторые из общеупотребимых сред
для заливки и заключения не смешиваются со спиртом. Поэтому
его необходимо постепенно замещать веществом (просветляющее
вещество), с которым среда для заливки смешивается. Наиболее
часто для этих целей применяют ксилол. При обработке ксилолом
материал становится прозрачным.
4. Заливка материала проводится для того, чтобы полу-
чить очень тонкий срез. При приготовлении препаратов для све-
товой микроскопии объекты заливают в парафин, которому за-
тем дают застыть.
5. Изготовление срезов. Как правило, толщина кусочков
материала слишком велика, чтобы сквозь них могло пройти дос-
таточное для исследования под микроскопом количество света.
Обычно приходится срезать очень тонкий слой исследуемого ма-
териала, то есть готовить срезы. Срезы можно приготовить, вруч-
ную при помощи остро отточенной бритвы. Но чаще применяют
специальное устройство – микротом. При помощи микротомных
ножей можно готовить срезы толщиной 8-12 мкм.
Срезы для светового микроскопа можно приготовить и из
замороженных кусочков материала, при этом первые четыре эта-
па выпадают, соответственно время изготовления препаратов
значительно сокращается. Для изготовления таких срезов приме-
няют замораживающий микротом.
6. Окрашивание срезов. Биологические структуры на пре-
паратах прозрачны и бесцветны, поэтому для получения контра-
ста между ними приходится прибегать к различным методам ок-
рашивания. Окрашивают срезы или одним красителем, или при-
меняют комбинированное окрашивание двумя или даже тремя
красителями. При окрашивании парафиновых срезов парафин
удаляют при помощи растворителя (обычно ксилолом). Наиболее
часто употребляется окрашивание при помощи гематоксилина и
эозина. При таком способе ядра клеток окрашиваются гематокси-
лином в синий или фиолетовый цвет, цитоплазма – в розовый.
Для выявления некоторых структур тканей и клеток (жир, волок-
на, включения и др.) применяют специальные красители.
7. Заключение. Полностью окрашенные срезы на пред-
метном стекле заключают в канадский бальзам, который не про-
пускает воздух и способен не ограничено долго сохранять срез.
Заключенный в среду срез накрывают покровным стеклом. Перед
заключением срезы обезвоживают и пропитывают растворителем
бальзама – ксилолом.
Временные препараты для светового микроскопа в отли-
часто для этих целей применяют ксилол. При обработке ксилолом Лабораторная работа 1 материал становится прозрачным. 4. Заливка материала проводится для того, чтобы полу- Методы исследования. Устройство микроскопа и основные пра- чить очень тонкий срез. При приготовлении препаратов для све- вила работы с ним товой микроскопии объекты заливают в парафин, которому за- тем дают застыть. Материал: микроскопы, постоянные гистологические препараты, пред- метные и покровные стекла, луковица лука, раствор йода, стеклянные 5. Изготовление срезов. Как правило, толщина кусочков палочки, препаровальные иглы, бритвы, вода водопроводная, пипетки, материала слишком велика, чтобы сквозь них могло пройти дос- фильтровальная бумага. таточное для исследования под микроскопом количество света. Обычно приходится срезать очень тонкий слой исследуемого ма- Общие сведения териала, то есть готовить срезы. Срезы можно приготовить, вруч- Микроскопические методы. Биологические объекты мож- ную при помощи остро отточенной бритвы. Но чаще применяют но исследовать как живыми, так и фиксированными. Из иссле- специальное устройство – микротом. При помощи микротомных дуемого материала можно приготовить постоянные и временные ножей можно готовить срезы толщиной 8-12 мкм. препараты. Методика приготовления постоянных препаратов до- Срезы для светового микроскопа можно приготовить и из вольно сложна, требует длительного времени и состоит из не- замороженных кусочков материала, при этом первые четыре эта- скольких этапов. па выпадают, соответственно время изготовления препаратов 1. Фиксация – это сохранение материала в состоянии, значительно сокращается. Для изготовления таких срезов приме- близком к естественному. Для этого необходимо быстро умерт- няют замораживающий микротом. вить ткани. Это лучше достигается при работе с небольшими ку- 6. Окрашивание срезов. Биологические структуры на пре- сочками живого материала. Используемое для этого вещество на- паратах прозрачны и бесцветны, поэтому для получения контра- зывается фиксатором. Быстрой фиксацией обеспечивается сохра- ста между ними приходится прибегать к различным методам ок- нение изначальной структуры объекта, причем ткани подверга- рашивания. Окрашивают срезы или одним красителем, или при- ются уплотнению, что позволяет готовить из них тонкие срезы. меняют комбинированное окрашивание двумя или даже тремя Фиксацию осуществляют путем погружения материала в красителями. При окрашивании парафиновых срезов парафин 96°-ный этиловый спирт или 4%-ный раствор формалина. удаляют при помощи растворителя (обычно ксилолом). Наиболее 2. Обезвоживание проводится при подготовке материала часто употребляется окрашивание при помощи гематоксилина и к заливке и заключению его в соответствующую среду, которая эозина. При таком способе ядра клеток окрашиваются гематокси- не смешивается с водой. Воду необходимо удалить и с целью луч- лином в синий или фиолетовый цвет, цитоплазма – в розовый. шей сохранности препаратов. Для сохранения микроструктуры Для выявления некоторых структур тканей и клеток (жир, волок- материала обезвоживание необходимо проводить не сразу. Это на, включения и др.) применяют специальные красители. достигается постепенным увеличением концентрации этилового 7. Заключение. Полностью окрашенные срезы на пред- спирта (от 50 - до 96°- ного) и заканчивается процесс обезвожи- метном стекле заключают в канадский бальзам, который не про- вания абсолютным (100°- ным) спиртом. пускает воздух и способен не ограничено долго сохранять срез. 3. Просветление. Некоторые из общеупотребимых сред Заключенный в среду срез накрывают покровным стеклом. Перед для заливки и заключения не смешиваются со спиртом. Поэтому заключением срезы обезвоживают и пропитывают растворителем его необходимо постепенно замещать веществом (просветляющее бальзама – ксилолом. вещество), с которым среда для заливки смешивается. Наиболее Временные препараты для светового микроскопа в отли-
Страницы
- « первая
- ‹ предыдущая
- …
- 2
- 3
- 4
- 5
- 6
- …
- следующая ›
- последняя »